Biologia molekularna roślin.pdf

(1211 KB) Pobierz
309175916 UNPDF
Zakład Biologii Molekularnej Roślin
Uniwersytet Warszawski
Instytut Biochemii i Biofi zyki PAN
B IOLOGIA M OLEKULARNA R OŚLIN
Skrypt do ćwiczeń
Warszawa, 2006
309175916.004.png 309175916.005.png 309175916.006.png 309175916.007.png
309175916.001.png
Spis Treści
1. Analiza zmian na poziomie chromatyny w cyklu komórkowym ...........................3
Izolacja białek z materiału roślinnego ...........................................................................................4
Elektroforeza białek w żelu poliakrylamidowym w obecności SDS ............................................5
Przygotowanie żelu do SDS PAGE...........................................................................................6
Elektroforeza ............................................................................................................................7
Barwienie białek w żelu ........................................................................................................... 7
Western blot .....................................................................................................................................8
Detekcja .................................................................................................................................... 9
2. Analiza mutantów RNAi w genach kodujących warianty histonu H1 . ..............10
RT-PCR ...........................................................................................................................................10
Matrycowy RNA ......................................................................................................................... 10
Odwrotna transkrypcja ................................................................................................................ 11
Półilościowy RT-PCR ................................................................................................................. 11
Izolacja całkowitego RNA .............................................................................................................11
Synteza jednoniciowego cDNA .....................................................................................................12
Półilościowy multiplex PCR ..........................................................................................................13
Przygotowanie żelu agarozowego ............................................................................................... 13
3. Badanie oddziaływań białek - drożdżowy system dwuhybrydowy .....................14
AtSWI3B ........................................................................................................................................14
FCA .................................................................................................................................................14
Schemat doświadczenia .................................................................................................................15
Transformacja drożdży .................................................................................................................15
Przygotowanie do wykonania testu dwuhybrydowego ..............................................................16
Test dwuhybrydowy ......................................................................................................................16
Zasady prowadzenia zeszytu laboratoryjnego .........................................................18
Literatura .....................................................................................................................18
UWAGI:
Zeszyt laboratoryjny jest podstawą do zaliczenia ćwiczeń. Wskazówki dotyczące
prowadzenia zeszytu laboratoryjnego znajdują się na stronie 18 skryptu.
Akrylamid i bisakrylamid są silnymi neurotoksynami wchłanianymi przez skórę.
W trakcie ważenia należy wkładać fartuchy, rękawiczki, maski i okulary. Pomimo
że poliakrylamid jest uważany za nietoksyczny zawsze należy zakładać rękawiczki
- może bowiem zawierać resztki niespolimeryzowanego akrylamidu.
2-merkaptoetanol i DTT – są szkodliwe dla błon śluzowych, górnych dróg
oddechowych, skóry i oczu. Powinny być używane tylko pod wyciągiem,
w rękawiczkach.
APS i TEMED są szkodliwe dla błon śluzowych, górnych dróg oddechowych, skóry
i oczu. Wdychanie oparów, jak i kontakt ze skórą może prowadzić do poważnych
schorzeń.
SDS – odważanie sypkiego odczynnika tylko w maseczce.
TCA – silny kwas, pracować w rękawiczkach i fartuchu
PMSF (Phenylmethanesulfonyl fluoride) – jest substancją toksyczną (inhibitor
esterazy acetylocholinowej)
Fenol - substancja bardzo toksyczna, powoduje trudno gojące się oparzenia skóry,
jest rakotwórczy.
X-gal jest substancją silnie trującą.
W trakcie pracy z ciekłym azotem należy uważać aby nie ulec poparzeniu. Pracować
w fartuchu i suchych rękawiczkach. Podczas ucierania należy trzymać moździerz
przez bibułę lub rękawice kuchenną. Nie wdychać intensywnie.
Roztwory tak oznaczone należy przygotować samemu.
© Zakład Biologii Molekularnej Roślin, UW, 10.04.2006 ver. 1.1
Substancja niebezpieczna.
309175916.002.png
A nAlizA z miAn nA P oziomie C hromAtyny w C yklu k omórkowym
3
1. Analiza zmian na poziomie chromatyny
w cyklu komórkowym
z jednej strony wpływać na oddziaływania DNA–
histony, decydując o lokalnym (lub jak w przypadku
mitozy – globalnym) rozluźnieniu lub kondensacji
chromatyny, co wpływa np. na możliwość wiązania
czynników transkrypcyjnych do znajdujących się
w tych obszarach promotorów. Z drugiej strony,
naznaczone modyikacjami epitopy histonów
mogą stanowić platformy rozpoznawane przez
różne białka regulatorowe. Niektóre modyikacje
histonów mogą brać udział w wielu, często różnych,
procesach. Np. fosforylacja seryny 10 histonu H3
bierze udział zarówno w kondensacji chromatyny
w czasie podziałów komórkowych, jak i w indukcji
genów wczesnej odpowiedzi pod wpływem różnych
czynników zewnętrznych - z czym wiąże się lokalne
rozluźnienie chromatyny.
Długość DNA w jądrze komórkowym jest
daleko większa niż rozmiar kompartmentu,
w którym się znajduje. Stąd też materiał genetyczny
musi występować w zorganizowanej i upakowanej
postaci, przy jednoczesnym zachowaniu możliwości
zachodzenia wielu ważnych procesów.
W przeciwieństwie do organizmów
prokariotycznych, DNA u eukaryota nie jest
„nagie”, ale występuje w postaci kompleksu
z białkami chromatynowymi, określającego
organizację strukturalną DNA w przestrzeni.
Dynamika tego kompleksu warunkuje zachodzenie
tak ważnych procesów, jak kondensacja
chromosomów, czy regulacja transkrypcji genów.
Podstawową jednostkę strukturalną chromatyny
stanowi nukleosom, będący kompleksem DNA
i pięciu zasadowych białek histonowych. W skład
pojedynczego nukleosomu wchodzi dyskowatego
kształtu oktamer histonów (tzw. rdzeń) H2A, H2B,
H3, H4, fragment cząsteczki DNA nawiniętej na
rdzeń nukleosomu, oraz stabilizujący oddziaływania
rdzeń – DNA histon łącznikowy H1. Za wiązanie
histonów w oktamerze, jak też za tworzenie miejsc
dla wiązania DNA, odpowiedzialne są domeny
Zależna od cyklu komórkowego fosforylacja
histonu H3 w serynie 10 jest konserwowana wśród
organizmów eukariotycznych. Ta dynamiczna
potranslacyjna modyikacja jest zaangażowana
zarówno w aktywację transkrypcji jak i w kondensację
oraz segregację chromosomów.
Mitoza jest jednym z ważniejszych etapów cyklu
komórkowego, kiedy to nowo zreplikowane nici
DNA są segregowane do dwóch biegunów dzielącej
się komórki, która następnie dzieli się na dwie
komórki potomne. Wiele procesów zachodzących
w trakcie mitozy jest uzależnionych od upakowania
chromatyny do jej mitotycznej formy. Pojawia
się coraz więcej dowodów na to, że upakowanie
chromosomów jest regulowane w dużej mierze
poprzez potranslacyjną modyikację histonów –
fosforylację. Obecnie fosforylacja histonu H3 jest
uznawana za jeden z mitotycznych biomarkerów.
Z obserwacji wielu organizmów wynika,
że poziom fosforylacji histonu H3 jest niski
w czasie interfazy, wzrasta na początku
podziałów komórkowych i opada podczas
telofazy. W przypadku komórek zwierzęcych
mitotycznie specyiczna fosforylacja S10 histonu
H3 rozpoczyna się w późnej fazie G2 w obszarach
perycentromerycznych heterochromatyny
i rozprzestrzenia się w sposób uporządkowany .
i zbieżny z kondensacją chromosomów. Modyikacja
ta jest jednolicie dystrybuowana na chromosomy
zarówno w mitozie jak mejozie.
U roślin natomiast, w trakcie podziałów
mitotycznych poziom fosforylacji jest wysoki
w częściach perycentromerycznych i niski
w obszarach ramion chromosomów. Ta specyiczna
dla perycentromerów fosforylacja może być
zaburzona przez działanie stresu chłodu lub
Rys.1. Schemat budowy nukleosomu z widocznymi
„ogonami histonowymi na zewnątrz rdzenia.
globularne histonów rdzeniowych o regularnie
rozmieszczonych ładunkach. N i C końce (tzn.
„ogony histonowe”) natomiast, mogą ulegać wielu
odwracalnym modyikacjom posttranslacyjnym
(Rys.1). W 2000 roku wysunięto hipotezę „kodu
histonowego”, która sugeruje, że istnieją pewne
określone wzory modyikacji histonów rdzeniowych
odpowiedzialne za zachodzenie konkretnych
procesów w komórce. Modyikacje te mogą bowiem
309175916.003.png
Zgłoś jeśli naruszono regulamin