wyklad13 genomika.doc

(115 KB) Pobierz

Patofizjologia – Wykład 13

Genomika a proteomika

 

Dotychczasowe metody analizy nie pozwalają ocenić całościowo stanu komórki.

 

 

Nowy rozdział w biologii molekularnej:

 

         Geny funkcjonują w sieci wzajemnych zależności

         Aktywacja genu w komórce jest równoznaczna z syntezą odpowiedniego mRNA (transkryptu), na matrycy którego powstaje białko

         Wykrycie mRNA jest dowodem ekspresji genu, a liczba kopii mRNA jest miarą ekspresji genu

         Ekspresja genów zmienia się w odpowiedzi na sygnały zewnętrzne
i wewnętrzne

         Tradycyjna biologia molekularna zakłada badanie jednego genu
w jednym doświadczeniu, co uniemożliwia uzyskanie obrazu całościowego.

 

 

Jak dotychczas badano ekspresję genów?

 

         Analiza northern-blotting

          czuła, ale półilościowa

          pracochłonna, tylko kilka genów równocześnie

         Q-PCR (TaqMan)

          ilościowa analiza metodą PCR w czasie rzeczywistym

          drogie sondy, kilka-kilkanaście genów na raz

         Differential Display
(porównanie ekspresji losowo namnożonych fragmentów RNA)

          analizuje wiele genów

          ryzyko wyników fałszywie dodatnich

         Analiza dot blot (macroarrays)

          ograniczona czułość

Wszystkie metody oparte są na hybrydyzacji badanego mRNA
z sondą o znanej sekwencji

         SAGE (sekwencyjna analiza ekspresji genów)

          czuła, analizuje wiele genów, również o nieznanej sekwencji

          wymaga znacznych umiejętności technicznych

 

 

 

Chcemy badać komórkę poprzez jednoczesną analizę
stanu wszystkich jej elementów (genów lub białek)

 

geny (DNA)                                         GENOMIKA

   

transkrypty genów (mRNA)    „TRANSKRYPTOMIKA”

   

białka                                                 PROTEOMIKA

 

Od mRNA do cDNA

Komórki z różnych tkanek mRNA wyizolowane z komórek klony cDNA otrzymane z cząsteczek mRNA

Znakowanie fluorochromem i hybrydyzacja:

n      po izolacji mRNA podlega odwrotnej transkrypcji, w czasie której jest znakowane fluorochromem

n      znakowana nić cDNA jest hybrydyzowana do DNA znajdującego się na mikromacierzy

n      detekcja sygnału fluoroscencyjnego umożliwia ocenę obecności danego transkryptu w pierwotnej próbce

 

Macierze cDNA:             
Porównawcza analiza ekspresji genów

cDNA z obydwu porównywanych typów tkanek znakujemy dwoma różnymi fluorochromami i hybrydyzujemy wspólnie na jednej sondzie.

Mikromacierze DNA: oligo czy cDNA?

macierze oligonukleotydowe

macierze cDNA

20-60 zasad/sekwencję

>100 zasad/sekwencję

syntetyzowane na podłożu

nakładane na podłoże

wiele sekwencji/gen

1 sekwencja/gen

pojedyncze znakowanie

podwójne znakowanie

pomiar bezwzględny

analiza porównawcza

 

CGH do mikromacierzy:

1. Czułość metody HR-CGH ~ 3-5 Mb

2. Zwiększenie rozdzielczości poprzez zastąpienie chromosomów metafazowych klonami BAC oraz PAC

3. Rozdzielczość metody zależy od wielkości  użytych klonów oraz odległości miedzy nimi w genomie – rozdzielczość 1Mpz wymaga użycia 3,500 klonów

 

Rodzaje i zastosowanie CGH do mikromacierzy:

         Mikromacierz skonstruowana dla określonego regionu chromosomu

              -  region 1p36 -   Yu W i wsp.,2003,

              -  region 15q   –   Locke i wsp.,2004,

              -  region 18q   –   Veltman JA i wsp., 2004,

              -  region 17p   –   Shaw CJ i wsp.,2004

         Mikromacierz kliniczna, zawiera klony bakte-ryjne specyficzne dla regionów krytycznych zespołów genetycznych oraz regiony subtelo-merowe

              (Cheung SW i wsp.,2005, Shaffer L i wsp., 1999)

         Mikromacierz sporządzona dla całego genomu

 

Zastosowania mikromacierzy:                                                                                                        początek
nowej ery w biologii molekularnej?

         genotypowanie – np. porównawcza hybrydyzacja (matrix CGH), detekcja mutacji, ocena polimorfizmów

         mapowanie

         badanie profilu ekspresji genów („transcriptomics”) – możliwa ocena ilościowa!

          różnice w ekspresji genów pomiędzy tkankami

          profil ekspresji genów podczas rozwoju

          ekspresja genów w zdrowiu i chorobie (np. porównanie nowotworu i tkanki zdrowej)

          wpływ leków na procesy zachodzące w komórkach

         badanie profilu ekspresji przez analizę białek komórkowych (proteomika)

 

 

 

 

 

 

 

W znaczeniu absolutnym proteom jest nieosiągalny podobnie jak horyzont

Jest zjawiskiem dynamicznym, a nie statycznym

 

Modyfikacje potranslacyjne:



fosforylacja                                          aktywność

glikozylacja                                          stabilność

sulfatacja                       lokalizacja

metylacja                                              przemiana

acetylacja                                             (metabolizm)

 

 

 

 

 

 

Zadania HUPO:

Działania na rzecz powszechnego dostępu drogą elektroniczną do wyników badań

- Odstąpienie od zasady patentowania wyników prac badawczych zarówno w ośrodkach akademickich jak i przemysłowych

- Właściwa koordynacja badań w zakresie merytorycznym i finansowym

- Opracowanie definicji proteomu w plazmie

- Występowanie z propozycjami zakresu badań w  określonych typach komórek

- Działania na rzecz utworzenia konsorcjum mającego na celu wytworzenie przeciwciał dla wszystkich białek człowieka

- Skatalogowanie pierwotnej struktury wszystkich białek

- Mapowanie wszystkich organelli i uzyskanie ich w postaci oczyszczonej (sub-proteomika)

- Opracowanie map interakcji między białkami w modelowych organizmach

- Integracja badań w zakresie proteomiki i genomiki

- Rozwój metod informatycznych i budowa odpowiedniej infrastruktury

 

Efekty HUPO:

·         Identyfikacja kompleksu-1 w stwardnieniu guzowatym

jako fizjologicznie występującego substratu białkowej kinazy B (PKB)

dzięki integracji danych z wykorzystaniem algorytmu ScanSite tylko na podstawie metod elektroforetycznych z uwzględnieniem ilości fragmentów sekwencji specyficznych dla PKB

·         Badania nad Neurokininą B (NKB)

w stanach przedrzucawkowych wzrost poziomu NKB

W badaniach cytotrofoblastu wzrost transkrypcji RZR alfa, obniżona transkrypcja c-abl, CD40 oraz lekkiego łańcucha dyneiny cytoplazmatycznej (genomika)

Obniżony poziom 21 białek NKB zależnych, związanych klinicznie ze stanem przedrzucawkowym (m. in. thoredoxin – udział w obronie przed stresem oksydacyjnym; annexin II – wewnątrznaczyniowe procesy trombolityczne; białko wiążące fosfanetanolaminę/inhibitor kinazy Raf – odpowiedź zapalna) (proteomika)

·         Badania nad proteomem powierzchni komórki

Wykrycie szeregu nowych białek na powierzchni komórek nowotworowych

·         Badania „in situ” w tkankach nowotworowych

z użyciem macierzy indukowanej laserowo

(matrix-assisted laser desorption/ionization; MALDI)

·         Badania z użyciem przeciwciał dla określonych typów białek – choroby autoimmunologiczne, w tym np. lupus erythematosus

 

Proteomika – badania proteomu:

         Skład wszystkich białek w komórce

         Skład wszystkich izoform i zmodyfikowanych postaci białek

         Interakcje między białkami

         Opis struktury białek

         Tworzenie przez białka złożonych struktur i kompleksów

         Pełny opis funkcjonowania komórki

-Two dimensional polyacrylamide gel electrophoresis – 2D PAGE np. profile białkowe w różnicowaniu podtypów białaczek

-Elektroforeza w gradiencie pH (immobilized pH gradient – IPG)stabilizacja gradientu pH w podłożu acrylamidowym

-Spektrometria w oparciu o masę molekularną białek i ich fragmentów (mass spectrometry)

-Badania układów białek z użyciem białek rekombinowanych lub czynników (znaczników)  wchodzących w reakcje z białkami – przeciwciała, peptydy, mikrocząsteczki

-Lokalizacja białek metodami fluorescencyjnymi

GFP – green fluorescent protein

-Fluorescencyjny rezonans przenoszenia energii

FRET – fluorescence resonance energy transfer

-FlexGene Consortium  - kolekcja cDNA niezbędna dla celów

Proteomika – badania proteomu:

·         Badania białek nieaktywnych, kompleksów białek lub megakompleksów na skalę komórki

·         Krystalografia z użyciem promieni X

·         Magnetyczny rezonans jądrowy (NMR)

·         Mikroskopia elektronowa

·         Tomografia elektronowa

 

Geny „kandydujące” w etiopatogenezie PCOS → patrz prezentacja profesora

 

Stosowane techniki badań polimorfizmów DNA:

·         VNTR minisatellite - variable number tandem repeats

·         SSLP (STRP) - single sequence length polymorphism (short tandem repeat polymorphism)

·         RFLP - restriction fragment length polymorphism

 





 

 

 

...

Zgłoś jeśli naruszono regulamin