Patofizjologia – Wykład 13
Genomika a proteomika
Dotychczasowe metody analizy nie pozwalają ocenić całościowo stanu komórki.
Nowy rozdział w biologii molekularnej:
• Geny funkcjonują w sieci wzajemnych zależności
• Aktywacja genu w komórce jest równoznaczna z syntezą odpowiedniego mRNA (transkryptu), na matrycy którego powstaje białko
• Wykrycie mRNA jest dowodem ekspresji genu, a liczba kopii mRNA jest miarą ekspresji genu
• Ekspresja genów zmienia się w odpowiedzi na sygnały zewnętrzne i wewnętrzne
• Tradycyjna biologia molekularna zakłada badanie jednego genu w jednym doświadczeniu, co uniemożliwia uzyskanie obrazu całościowego.
Jak dotychczas badano ekspresję genów?
• Analiza northern-blotting
– czuła, ale półilościowa
– pracochłonna, tylko kilka genów równocześnie
• Q-PCR (TaqMan)
– ilościowa analiza metodą PCR w czasie rzeczywistym
– drogie sondy, kilka-kilkanaście genów na raz
• Differential Display (porównanie ekspresji losowo namnożonych fragmentów RNA)
– analizuje wiele genów
– ryzyko wyników fałszywie dodatnich
• Analiza dot blot (macroarrays)
– ograniczona czułość
Wszystkie metody oparte są na hybrydyzacji badanego mRNA z sondą o znanej sekwencji
• SAGE (sekwencyjna analiza ekspresji genów)
– czuła, analizuje wiele genów, również o nieznanej sekwencji
– wymaga znacznych umiejętności technicznych
Chcemy badać komórkę poprzez jednoczesną analizę stanu wszystkich jej elementów (genów lub białek)
geny (DNA) GENOMIKA
↓
transkrypty genów (mRNA) „TRANSKRYPTOMIKA”
białka PROTEOMIKA
Od mRNA do cDNA
Komórki z różnych tkanek→ mRNA wyizolowane z komórek→ klony cDNA otrzymane z cząsteczek mRNA
Znakowanie fluorochromem i hybrydyzacja:
n po izolacji mRNA podlega odwrotnej transkrypcji, w czasie której jest znakowane fluorochromem
n znakowana nić cDNA jest hybrydyzowana do DNA znajdującego się na mikromacierzy
n detekcja sygnału fluoroscencyjnego umożliwia ocenę obecności danego transkryptu w pierwotnej próbce
Macierze cDNA: Porównawcza analiza ekspresji genów
cDNA z obydwu porównywanych typów tkanek znakujemy dwoma różnymi fluorochromami i hybrydyzujemy wspólnie na jednej sondzie.
Mikromacierze DNA: oligo czy cDNA?
macierze oligonukleotydowe
macierze cDNA
20-60 zasad/sekwencję
>100 zasad/sekwencję
syntetyzowane na podłożu
nakładane na podłoże
wiele sekwencji/gen
1 sekwencja/gen
pojedyncze znakowanie
podwójne znakowanie
pomiar bezwzględny
analiza porównawcza
CGH do mikromacierzy:
1. Czułość metody HR-CGH ~ 3-5 Mb
2. Zwiększenie rozdzielczości poprzez zastąpienie chromosomów metafazowych klonami BAC oraz PAC
3. Rozdzielczość metody zależy od wielkości użytych klonów oraz odległości miedzy nimi w genomie – rozdzielczość 1Mpz wymaga użycia 3,500 klonów
Rodzaje i zastosowanie CGH do mikromacierzy:
• Mikromacierz skonstruowana dla określonego regionu chromosomu
- region 1p36 - Yu W i wsp.,2003,
- region 15q – Locke i wsp.,2004,
- region 18q – Veltman JA i wsp., 2004,
- region 17p – Shaw CJ i wsp.,2004
• Mikromacierz kliniczna, zawiera klony bakte-ryjne specyficzne dla regionów krytycznych zespołów genetycznych oraz regiony subtelo-merowe
(Cheung SW i wsp.,2005, Shaffer L i wsp., 1999)
• Mikromacierz sporządzona dla całego genomu
Zastosowania mikromacierzy: począteknowej ery w biologii molekularnej?
• genotypowanie – np. porównawcza hybrydyzacja (matrix CGH), detekcja mutacji, ocena polimorfizmów
• mapowanie
• badanie profilu ekspresji genów („transcriptomics”) – możliwa ocena ilościowa!
– różnice w ekspresji genów pomiędzy tkankami
– profil ekspresji genów podczas rozwoju
– ekspresja genów w zdrowiu i chorobie (np. porównanie nowotworu i tkanki zdrowej)
– wpływ leków na procesy zachodzące w komórkach
• badanie profilu ekspresji przez analizę białek komórkowych (proteomika)
W znaczeniu absolutnym proteom jest nieosiągalny podobnie jak horyzont
Jest zjawiskiem dynamicznym, a nie statycznym
Modyfikacje potranslacyjne:
fosforylacja aktywność
glikozylacja stabilność
sulfatacja lokalizacja
metylacja przemiana
acetylacja (metabolizm)
Zadania HUPO:
- Działania na rzecz powszechnego dostępu drogą elektroniczną do wyników badań
- Odstąpienie od zasady patentowania wyników prac badawczych zarówno w ośrodkach akademickich jak i przemysłowych
- Właściwa koordynacja badań w zakresie merytorycznym i finansowym
- Opracowanie definicji proteomu w plazmie
- Występowanie z propozycjami zakresu badań w określonych typach komórek
- Działania na rzecz utworzenia konsorcjum mającego na celu wytworzenie przeciwciał dla wszystkich białek człowieka
- Skatalogowanie pierwotnej struktury wszystkich białek
- Mapowanie wszystkich organelli i uzyskanie ich w postaci oczyszczonej (sub-proteomika)
- Opracowanie map interakcji między białkami w modelowych organizmach
- Integracja badań w zakresie proteomiki i genomiki
- Rozwój metod informatycznych i budowa odpowiedniej infrastruktury
Efekty HUPO:
· Identyfikacja kompleksu-1 w stwardnieniu guzowatym
jako fizjologicznie występującego substratu białkowej kinazy B (PKB)
dzięki integracji danych z wykorzystaniem algorytmu ScanSite tylko na podstawie metod elektroforetycznych z uwzględnieniem ilości fragmentów sekwencji specyficznych dla PKB
· Badania nad Neurokininą B (NKB)
w stanach przedrzucawkowych wzrost poziomu NKB
W badaniach cytotrofoblastu wzrost transkrypcji RZR alfa, obniżona transkrypcja c-abl, CD40 oraz lekkiego łańcucha dyneiny cytoplazmatycznej (genomika)
Obniżony poziom 21 białek NKB zależnych, związanych klinicznie ze stanem przedrzucawkowym (m. in. thoredoxin – udział w obronie przed stresem oksydacyjnym; annexin II – wewnątrznaczyniowe procesy trombolityczne; białko wiążące fosfanetanolaminę/inhibitor kinazy Raf – odpowiedź zapalna) (proteomika)
· Badania nad proteomem powierzchni komórki
Wykrycie szeregu nowych białek na powierzchni komórek nowotworowych
· Badania „in situ” w tkankach nowotworowych
z użyciem macierzy indukowanej laserowo
(matrix-assisted laser desorption/ionization; MALDI)
· Badania z użyciem przeciwciał dla określonych typów białek – choroby autoimmunologiczne, w tym np. lupus erythematosus
Proteomika – badania proteomu:
• Skład wszystkich białek w komórce
• Skład wszystkich izoform i zmodyfikowanych postaci białek
• Interakcje między białkami
• Opis struktury białek
• Tworzenie przez białka złożonych struktur i kompleksów
• Pełny opis funkcjonowania komórki
-Two dimensional polyacrylamide gel electrophoresis – 2D PAGE np. profile białkowe w różnicowaniu podtypów białaczek
-Elektroforeza w gradiencie pH (immobilized pH gradient – IPG)stabilizacja gradientu pH w podłożu acrylamidowym
-Spektrometria w oparciu o masę molekularną białek i ich fragmentów (mass spectrometry)
-Badania układów białek z użyciem białek rekombinowanych lub czynników (znaczników) wchodzących w reakcje z białkami – przeciwciała, peptydy, mikrocząsteczki
-Lokalizacja białek metodami fluorescencyjnymi
GFP – green fluorescent protein
-Fluorescencyjny rezonans przenoszenia energii
FRET – fluorescence resonance energy transfer
-FlexGene Consortium - kolekcja cDNA niezbędna dla celów
· Badania białek nieaktywnych, kompleksów białek lub megakompleksów na skalę komórki
· Krystalografia z użyciem promieni X
· Magnetyczny rezonans jądrowy (NMR)
· Mikroskopia elektronowa
· Tomografia elektronowa
Geny „kandydujące” w etiopatogenezie PCOS → patrz prezentacja profesora
Stosowane techniki badań polimorfizmów DNA:
· VNTR minisatellite - variable number tandem repeats
· SSLP (STRP) - single sequence length polymorphism (short tandem repeat polymorphism)
· RFLP - restriction fragment length polymorphism
...
coiioc