Antybiotyki.doc

(1420 KB) Pobierz

dr Romanik

PRELEKCJA 3

Badanie wrażliwości drobnoustrojów na leki, problem lekooporności.

 

Antybiotyki - substancje o efekcie przeciwdrobnoustrojowym, wytwarzane prze mikroorganizmy (bakterie, grzyby) lub uzyskane na drodze półsyntetycznej bądź syntetycznej, lecz mające naturalny wzorzec.

 

Chemioterapeutyki - związki o aktywności przeciwdrobnoustrojowej, uzyskane na drodze syntetycznej, które nie posiadają naturalnego wzorca.

 

Antybiotyki - podział:

1. naturalne:

- penicylina benzylowa

- glikopeptydy

- aminoglikozydy

- makrolidy

- cefalosporyny

 

2. półsyntetyczne:

- penicyliny półsyntetyczne

- cafalosporyny

- aminoglikozydy

- makrolidy

 

3. syntetyczne:

- aztreonam

- chloramfenikol

 

Chemioterapeutyki - syntetyczne:

- chinolony

- sulfonamidy

- trimetoprim

 

Miejsca docelowego działania leków przeciwbakteryjnych:

1. sulfonamidy - zaburzają syntezę puryn w komórce bakteryjnej

2. antybiotyki beta-laktamowe (penicyliny, cefalosporyny, karbapenemy, monobaktamy) i glikopeptydy - zaburzają syntezę ściany komórkowej;

- beta-laktamy działają poprzez białko wiążące penicylinę - PBP, glikopeptydy hamują syntezę ściany komórkowej na etapie transportu substancji.

3. kolistyna, polimyksyna, amfoterycyna B - zaburzają strukturę błony komórkowej

4. Rifampicyna - hamuje aktywność polimerazy RNA

5. chinolony - blokują aktywność gyrazy DNA

6. Chloramfenikol, tetracykliny, aminoglikozydy i makrolidy - działają na polirybosomy bakteryjne

 

 

 

Miejsce docelowego działania leków przeciwgrzybiczych:

1. Echinokandyny (np. caspofungina) - hamują syntezę ściany komórkowej poprzez inhibicję syntetazy 1,3-beta-glukanowej, co skutkuje niestabilnością osmotyczną komórki grzyba i jej lizą

2. Antybiotyki polienowe - wiążą się z błoną komórkową grzyba powodując jej rozerwanie

3. Gryzeofulwina - hamuje reorganizację mikrotubuli śródkomórkowych

4. Alikiloaminy - blokują syntezę ergosterolu w błonie komórkowej poprzez hamowanie epoksydazy skwalenowej

5. Fluorocytozyna - wychwytywana aktywnie przez permeazy, blokuje syntezę RNA i DNA

6. Azole - blokują syntezę ergosterolu w błonie komórkowej poprzez inhibicję 14-alfa-desmetylazy zależnej od cytochromu P450

 

Miejsca docelowego działania leków przeciwbakteryjnych:

a) blokowanie syntezy ściany komórkowej:

- beta-laktamy,

- glikopeptydy

b) uszkadzanie błony cytoplazmatycznej:

- polimyksyny

c) blokowanie syntezy białka:

- chloramfenikol

- tetracykliny

- makrolidy

- aminoglikozydy

- kwas fusydowy

d) blokowanie syntezy DNA:

- ko-trimoksazol

- chinolony

- nitrofurany

- rifamycyny

- metronidazol

 

 

Ze względu na sposób działania wyróżniamy antybiotyki:

1. bakteriobójcze:

- beta-laktamy

- aminoglikozydy

- chinolony

- glikopeptydy

- ko-trimoksazol

2. bakteriostatyczne (stosować szczególnie wtedy, gdy bakterie produkują toksyny):

- makrolidy

- linkozamidy

- tetracykliny

- chloramfenikol

- trimetoprim, sulfonamidy

 

 

Podział antybiotyków w oparciu o skuteczność przeciwko określonym grupom drobnoustrojów:

1. Skuteczne przeciwko bakteriom Gram(+):

- penicylina G

- glikopeptydy

- linkozamidy

- makrolidy

- kwas fusydowy

2. Skuteczne przeciw bakteriom Gram(-):

- aztreonam

3. Skuteczne przeciw bakteriom zarówno Gram(+) jak i (-):

- penicyliny o szerokim spektrum działania

- cefalosporyny

- aminoglikozydy

- chinolony

- tetracykliny

- ko-trimoksazol

4. Skuteczne przeciwko bakteriom beztlenowym:

- linkozamidy

- metronidazol

- chloramfenikol

- penicyliny z inhibitorami beta-laktamaz

- cefoksytyna

5. Skuteczne przeciwko bakteriom atypowym:

- makrolidy

- tetracykliny

- rifampicyna

- ko-trimoksazol

- chinolony

 

Metody oznaczania wrażliwości bakterii na chemioterapeutyki:

1. identyfikacja

2. metody jakościowe

3. metody ilościowe

 

Ropień palca u dziecka - właściwe postępowanie:

- antybiotyków nie podajemy doustnie

- rozcinamy ropnia i opróżniamy

- po przepłukaniu pobieramy materiał do badania mikrobiologicznego

 

Oznaczenie oporności polega koniec końców na znalezieniu genu oporności w badanych bakteriach.

 

Metody jakościowe:

a) metoda dyfuzyjna z użyciem krążków bibułowych nasyconych chemioterapeutykami w stężeniach jakie osiągają one w surowicy; metoda podlega standaryzacji zgodnie z zaleceniami:

              - NCCLS - National Committee for Clinical Laboratory Standards

              - ICS - International Collaborative Study

b) Metody te różnią się dla poszczególnych grup bakterii. Różnice dotyczą składu podłoży, inokulum, posiewu, warunków i czasu inkubacji oraz interpretacji wyników. Najczęściej wykorzystywanym podłożem jest agar Muellera-Hintona.

 

Inokulum – liczba komórek bakteryjnych w podłożu płynnym wyrażona jako liczba jednostek tworzących kolonie na mililitr (CFU/ml)

- inokulum może być również określane jako zmętnienie lub gęstość optyczna zawiesiny bakteryjnej

 

Standard McFarlanda:

- składa się on z serii standardów (rozcieńczeń BaSO4) o różnych zmętnieniach pozwalających na oszacowanie gęstości (stężenia) zawiesiny bakteryjnej

- używany do standaryzacji metod mikrobiologicznych

- standardy te oznaczone są numerami wg skali McFarlanda

 

Równoważniki:

- stężenia drobnoustrojów zależą od wielkości kolonii, ilości odpowiadają średnim wartościom dotyczącym bakterii; dla drożdżaków, których kolonie są większe, liczba kolonii powinna wynosić ok. 30

- wartość powinna odpowiadać optycznej gęstości zawiesiny, roztwór BaSO4 nie daje takiej samej gęstości optycznej ponieważ rozmiar i cząsteczki różnią się od bakterii i inaczej załamują światło

 

Metody ilościowe:

a) metody rozcieńczeniowe na podłożu stałym lub płynnym, określające najmniejsze stężenie chemioterapeutyku hamujące wzrost bakterii - MIC w mg/l.

b) metoda seryjnych rozcieńczeń antybiotyku w podłożu płynnym - umożliwia także oznaczenie wartości najmniejszego stężenia bakteriobójczego (MBC)

c) Metoda dyfuzyjna przy użyciu pasków bibułowych nasyconych antybiotykiem w gradiencie stężeń (E-test); stosowana m.in. dla: H. pylori , Campylobacter

 

Określenie wielkości strefy zahamowania wzrostu (mm) i wielkości MIC:

- pozwala na uzyskanie stężeń granicznych, umożliwiających zakwalifikowanie szczepu do kategorii:

              - wrażliwych

              - średnio wrażliwych

              - opornych

 

MIC (minimum inhibitory concentration) - najmniejsze stężenie leku wyrażone w mg/l, określane w warunkach in vitro, hamujące wzrost bakterii przy określonej gęstości inokulum w określonym czasie.

MBC – minimalne stężenie leku wyrażone w mg/l, określone w warunkach in vitro, przy którym ginie 99,9% bakterii, przy określonej gęstości inokulum w określonym czasie.

Tolerancja – jest wynikiem braku aktywacji enzymów autolitycznych przez antybiotyk beta-laktamowy, który wykazuje spadek lub brak działania bakteriobójczego bez utraty działania hamującego (nie zmienia się wartość MIC!); przyjęta definicja tolerancji oznacza stosunek MBC/MIC większy lub równy od 32!

 

Zakres badań lekowrażliwości:

a) antybiogram podstawowy - obejmuje o antybiotyki stosowane jako leki pierwszego rzutu

- antybiogram podstawowy dla szczepów uzyskanych z moczu obejmuje antybiotyki stosowane jako leki pierwszego rzutu wobec szczepów izolowanych w zakażeniach układu moczowego

b) antybiogram rozszerzony - zawiera rozszerzoną listę antybiotyków stosowanych wobec drobnoustrojów (również dla szczepów izolowanych w zakażeniach układu moczowego) wieloopornych i/lub izolowanych w ciężkich zakażeniach.

 

80% zakażeń górnych dróg oddechowych powodowanych jest przez Streptococcus pyogenes:

- wymaz

- wprowadzamy materiał do pojemnika z buforem

- nakrapiamy na płytkę

 

Infekcja wirusowa zazwyczaj ulega samowyleczeniu. Gdy infekcja się przedłuża - podejrzewamy infekcję bakteryjną i przepisujemy antybiotyk.

 

Slidex MRSA detection:

a) zasada metody:

- cząsteczki lateksu opłaszczone przeciwciałami anty-PBP2' reagują ze szczepem MRSA powodując aglutynację możliwą do wykrycia okiem nieuzbrojonym

 

Ostatnio opisano w Japonii i USA szczepy o obniżonej wrażliwości na glikopeptydy: VISA (lub GISA). Fenotyp ten uwarunkowany jest zmianami w strukturze ściany komórkowej gronkowca. Określany jest jako obniżona wrażliwość na wankomycynę (MIC 2-8 mg) i/lub oporność na teikoplaninę → nie należy stosować wankomycyny w leczeniu, ponieważ szczepy są oporne. Szczepy VISA należy weryfikować metodą przeglądową wg NCCLS.

Szczególnie łatwo nabywa oporność na wankomycynę Staphylococcus haemolyticus.

 

Wykrywanie ESBL – beta-laktamaz o rozszerzonym spektrum działania przy użyciu testu dwóch krążków:

- test wykorzystuje wrażliwość ESBL na inhibitory beta-laktamaz

- powstaje asymetryczne powiększenie strefy zahamowania wzrostu od strony krążka z inhibitorem (które świadczy o synergizmie antybiotyku beta-laktamowego i inhibitora)

Szczepy wytwarzające ESBL są oporne na:

- wszystkie penicyliny

- cafalosporyny I-III generacji (z wyjątkiem cefamycyn)

- monobaktamy

W leczeniu tych szczepów stosujemy:

- antybiotyki innych grup

- połączenie piperacyliny z tazobaktamem (beta-laktam + inhibitor)

- karbapenemy

 

 

 

 

E-test:

-         pełna nazwa: Epsilometer test

-         służy do oznaczania wartości MIC

-         na krążek z agarem, na który wysiano bakterię nakładany jest nasączony antybiotykiem pasek z narysowaną skalą

-         antybiotyk dyfunduje tworząc gradient stężenia w agarze (najczęściej agar MH - Muellera-Hintona)

-         powstaje eliptyczna strefa zahamowania wzrostu

-         punkt w którym granica strefy zahamowania wzrostu przetnie się z paskiem wyznacza wartość MIC dla badanego szczepu

Przykład E-testu (eliptyczne przejaśnienie – strefa zahamowania wzrostu):



1

 

...
Zgłoś jeśli naruszono regulamin