ruchyroslin.pdf

(60 KB) Pobierz
549078659 UNPDF
RUCHY ROŚLIN
Ćw.1 Ruchy cytoplazmy.
Sporządziliśmy preparat mikroskopowy z liścia moczarki kanadyjskiej. Obserwowane
przez nas ruchy cytoplazmatyczne miały wyraźny charakter ruchów rotacyjnych wokół
centralnej wakuoli. Napędzane są one poprzez cykliczną dysocjację i resocjację kompleksów
miozyny i aktyny. Ruchy takie zachodzą z udziałem hydrolizy ATP.
Ćw.2. Ruch chloroplastów
Po kilka listków mchu umieściliśmy w niewielkiej ilości wody na trzech szkiełkach
zegarkowych. Szkiełka z listkami wystawiliśmy na odmienne warunki świetlne.
a) światło dzienne
b) świetlówka o białej barwie światła (moc ok. 36W)
c) ciemność
Po upływie 1,5 godziny z listków mchu zaadoptowanych do różnych warunków świetlnych
sporządziliśmy preparaty i dokonaliśmy obserwacji pod mikroskopem.
Rysunki oraz wnioski:
a) b) c)
1
549078659.007.png 549078659.008.png 549078659.009.png
a) chloroplasty umieszczone w miarę równomiernie na całej powierzchni komórki
b) chloroplasty układają się przy ścianach równoległych do kierunku padania światła
c) chloroplasty umieszczone w miarę równomiernie na całej powierzchni komórki
Wyrazem adaptacji roślin do zmieniających się warunków świetlnych jest min. zmiana
ułożenia chloroplastów w komórkach. W świetle o natężeniu mniejszym niż punkt wysycenia
fotosyntezy, chloroplasty gromadzą się przy prostopadłych do kierunku padania światła
ścianach komórki, co umożliwia maksymalną absorpcję energii. Jeżeli natomiast roślina
znajdzie się w silnym świetle „wysycającym” fotosyntezę, chloroplasty układają się przy
ścianach komórki równoległych do kierunku padania światła, przez co zmniejszają ilość
absorbowanego światła i unikają uszkodzenia.
Ćw.3 Fototaksja u Chlamydomonas.
Przygotowaną zawiesinę glonów umieściliśmy przed źródłem światła, dodatkowo
instalując przesłony do redukcji natężenia promieniowania. W takim układzie, co 30 min
mierzyliśmy absorbancję zawiesiny glonów sprzed każdej przesłony. Jednak uzyskane
pomiary nie dają wiarygodnych wyników. Prawdopodobna przyczyna to słaba jakość użytych
glonów, ponieważ przy pobieraniu prób dochowaliśmy szczególnej staranności i raczej
wykluczamy błąd spowodowany zmieszaniem warstw glonów. Zakładamy, że komórki
glonów w skutek ruchów fototaktycznych będą kierowały się, w strone obszaru o
umiarkowanym (a zarazem optymalnym) dla nich natężeniu światła. Podstawą takich ruchów
jest naprzemienne oświetlanie plamki ocznej światłem o zmiennym natężeniu, co wywołuje
cykliczne depolaryzacje błony komórkowej i zmianę intensywności ruchu wici.
Czas
[godz.]
Natężenie światła[W]
Przesłona 180μm Przesłona 250μm Przesłona 320μm Przesłona
390μm Przesłona 500μm
0
0,0597
0,0597
0,0597
0,0597
0,0597
0,5
0,485
0,439
0,524
0,465
0,446
1
0,548
0,564
0,560
0,572
0,507
1,5
0,556
0,465
0,319
0,554
0,526
2
0,586
0,456
0,419
0,458
0,584
2
549078659.010.png 549078659.001.png 549078659.002.png 549078659.003.png 549078659.004.png 549078659.005.png 549078659.006.png
Ćw.4 Sejsmonastia u mimozy
Nie byliśmy w stanie wykonać tego doświadczenia zgodnie z instrukcją podaną w
skrypcie, gdyż roślina w bardzo minimalnym stopniu reagowała na zadawane jej bodźce
mechaniczne. (Jest to związane z porą roku).
Ćw.5 Tropizmy
Fototropizm.
Nasiona lnu zwyczajnego umieściliśmy na płytce szklanej owiniętej namoczoną bibułą, a
następnie wstawiliśmy ją do szklanego naczynia z wodą, owiniętego folią aluminiową.
Naczynie zabezpieczyliśmy przed parowaniem i dostępem światła. Na szczelinę
skierowaliśmy źródło światła i pozostawiliśmy na 7 dni. Po upływie tego czasu mogliśmy
zaobserwować wyraźne wygięcie pędu w stronę światła padającego przez szczelinę.
Wnioski:
Obserwowany fototropizm dodatni jest efektem reakcji komórek na gradient stężenia auksyny
w poprzek organu. Absorpcja światła wywołuje autofosforylację fototropin 1i 2, które
wywołują fosforyzację nośnika auksyny. Ten z kolei transportuje auksynę na stronę
zacienioną, na której następują intensywniejsze podziały komórkowe – pęd wygina się w
stronę światła.
Geotropizm
Nasiona lnu zwyczajnego umieściliśmy w ten sam sposób, jak w poprzednim doświadczeniu
(brak jednak było szczeliny w folii). Taki układ pozostawiliśmy na 7 dni. Po 7 dniach
zaobserwowaliśmy, iż korzeń kieruje się ku dołowi naczynia - w stronę zgodną z kierunkiem
działania siły grawitacji.
Wnioski:
3
Korzeń wykazuje geotropizm dodatni. Miejscem percepcji bodźca są komórki kolumeli –
statocyty. Znajdujące się w nich statolity osadzają się na cysternach RE, powodując
uwolnienie jonów wapnia z wnętrza cystern. Korzeń rósł wertykalnie, więc rozmieszczenie
transportera auksyny PIN3 w komórkach kolumeli było równomierne i korzeń skierował się
ku dołowi. W przypadku umieszczenia rośliny w pozycji horyzontalnej następuje
przemieszczenia białek PIN3 do dolnej części komórek kolumeli, co indykuje polarny
transport auksyny na dolną stronę czapeczki korzeniowej, a następnie do warstwy korowej
korzenia. Wysokie stężenie auksyny powoduje wygięcie organu w kierunku zgodnym z
kierunkiem działania siły grawitacji.
4
Zgłoś jeśli naruszono regulamin